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间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒产品介绍
点击次数:148 更新时间:2024-08-08

间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒

,成软骨诱导液

货号:YJ-MSCYD-003

价格: 2880.0

规格: 200ml

产品描述

本产品为团队精心优化的间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒,可增强间充质干细胞向成软骨细胞分化的能力。

本产品仅用于科研用途,不可用于诊断、治疗、临床、家庭及其他用途。

产品组成成分及保存

试剂名称

体积

保存条件

有效期

地塞米松

20μL

-20℃

1 Year

脯氨酸

200μL

-20℃

1 Year

抗坏血酸

600μL

-20℃

1 Year

TGF-β1

2mL

-20℃

1 Year

丙酮酸钠

2mL

-20℃

1 Year

ITS 添加物

2mL

-20℃

1 Year

双抗

2mL

-20℃

1 Year

胎牛血清

20mL

-20℃

1 Year

基础培养基

200mL

2-8℃

1 Year

甲苯胺蓝染色液

5mL

RT(室温)

1 Year

 注意:

1.为保证产品的有效性,请避免反复冻融。

2.现用现配,配制好的预混液保存于2-8℃,有效期1 month;配制好的完全培养基保存于2-8℃,有效期12 hours.

产品使用说明

1. 成软骨诱导分化完全培养基的配制

室温条件下融化各因子及血清。各因子融化后,瞬时离心,使溶液集中于离心管底部。

(注意:若因子或血清中有沉淀物,属正常现象,无须过滤,避免成分丢失。)

根据实验用量,于无菌操作台中配制诱导分化完全培养基,建议每次配制50mL,配制比例见下表:

试剂成分

配制比例

50mL配制体系

地塞米松

0.01%

5μL

脯氨酸

0.1%

50μL

抗坏血酸

0.3%

150μL

TGF-β1

1%

500μL

丙酮酸钠

1%

500μL

ITS 添加物

1%

500μL

双抗

1%

500μL

胎牛血清

10%

5mL

基础培养基

补充至所需体积

补充至总体积为50mL

2. 成软骨诱导分化实验步骤

建议取第3~5代、纯度达90%以上、状态良好的间充质干细胞,将其消化下来,离心收集,使用间充质干细胞完全培养基调整细胞密度为1~5×105cell/mL,均匀铺于6孔板中,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。

(注意:此处细胞密度及培养液体积以6孔板为例,若为其它培养器皿,请根据实际情况调整细胞密度及培养液体积。)

待细胞汇合度达80%~100%时,即可进行诱导分化。

小心吸弃细胞培养上清,沿孔壁缓慢加入提前配制好的诱导分化完全培养基,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。

(注意:完全培养基加入细胞前需提前置于37℃预热。)

2day换用新鲜的诱导分化完全培养基。换液时,若细胞培养上清颜色变为澄清的黄色,是由于细胞量较大,培养基消耗较快导致的,请及时调整为每日换液。

(注意:完全培养基加入前需提前置于37℃预热。)

细胞诱导3周后,即可进行甲苯胺蓝染色鉴定。

3. 甲苯胺蓝染色分析

细胞诱导分化结束后,小心吸弃细胞培养上清,1×PBS润洗1~2次。每孔加入1mL细胞固定液(4%中性甲醛溶液等),室温固定30 min

吸弃细胞固定液,1×PBS润洗2次。沿孔壁缓慢加入甲苯胺蓝染色液,每孔1mL,室温染色30min

(注意:染色液底部可能会有沉淀,吸取时尽量不要触及底部。若染色后有沉淀,1×PBS洗去即可。)

吸出染色液,1×PBS润洗,去掉浮色。显微镜下观察细胞染色效果,背景呈淡蓝色,成软骨细胞呈紫红色。

(注意:染色液可重复使用,建议收集。)

间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒.png

质量控制

无菌检测(细菌、真菌和支原体检测)

pH测试

 渗透压检测

内毒素

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注意事项

仅限科研用。
培养体系中的一些组分是对人体健康有害的物质,请不要用暴露的皮肤接触培养体系的液体和有培养体系的液体残留的容器内部;这部分有害物质的浓度和危害性都较低,如有接触,立即用自来水冲洗即可。

间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒.png


 

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