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禽腺病毒I群(FADV-I)核酸检测试剂盒(荧光-PCR法)
点击次数:240 更新时间:2024-08-16

禽腺病毒I群(FADV-I)核酸检测试剂盒(荧光-PCR法)

 

【产品名称】

商品名称:禽腺病毒I群 (FADV-I)核酸检测试剂盒(荧光-PCR法)

 

【包装规格】50T/盒

                                                                    

【预期用途】

禽腺病毒感染主要感染家禽,一旦感染容易通过家禽消化道及呼吸道进行扩散,引起家禽暴发流行性疾病,引起病鸡出现精神不振、排稀粪便,心包积液渗出、肝胀肿胀出血,造成家禽死亡禽腺病毒I群为常见型,包括A\B\C\D\E型。本试剂盒适用于检测呼吸道分泌物棉拭子(感染I群禽腺病毒的鸡、火鸡、鹅、鹌鹑)、卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织、泄殖腔拭子(感染I群禽腺病毒的鸡、鸭)等样本中的禽腺病毒感染的辅助诊断,其检测结果仅供参考。

 

【检验原理】

本试剂盒采用TaqMan探针法实时荧光PCR技术,选用3套引物探针组合,包含禽腺病毒I群的A型,C型,E型的特异性基因,分别设计1对特异性引物,结合1条特异性探针,用荧光PCR技术对禽腺病毒的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

 

【试剂组成】

     

        

FADV-I酶液

      25μL×1管

FADV-I反应液

   975uL×1管

FADV-I阳性质控品

      50μL ×1管

阴性质控品

     50μL ×1管

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

 

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融少于7次,有效期12个月。

 

适用仪器

ABI 、安捷伦MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列荧光定量PCR检测仪。

 

【标本采集】

    病死禽取卵巢、输卵管、卵泡、子宫和输卵管粘膜组织;活鸡取呼吸道拭子或泄殖腔拭子,放于1mL 50%甘油生理盐水中

 

【保存和运输】

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过6个月,标本运送应采用2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

 

使用方法

1. 样品处理(样本处理区)

1.1 样本前处理

组织样品:每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g,手术剪剪碎混匀后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;泄殖腔拭子直接取100μL进行DNA提取。

 

1.2 DNA提取

为了使实验结果稳定、有效、可靠,建议使用商品化的RNA 提取试剂盒进行提取,严格按照对应试剂盒说明书进行操作。

 

2. 试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照;样品每满7份,多配制1份),每测试反应体系配制如下表:

 

试剂

FADV-I反应液

酶液

用量(样本数为N)

19.5μL

0.5μL

 

3. 加样(样本处理区)

将步骤1提取的DNA、阳性质控品、阴性质控品各取5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。

 

4. PCR扩增(核酸扩增区)

4.1 将待检测反应管置于荧光定量PCR仪反应槽内;

4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM检测禽腺病毒A型,淬灭通道(Quencher Dye)NONE,请勿选择ROX参比荧光。

4.3 推荐循环参数设置:

步骤

循环数

温度

时间

收集荧光信号

1

1 cycle

95℃

3min

2

40 cycles

95

15sec

55℃

30sec

 

 

5. 结果分析判定

5.1 结果分析条件设定

设置Baseline和Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节Baseline的start值(一般可在3~15范围内调节)、stop值(一般可在5~20范围内调节),以及Threshold的Value值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。

 

5.2 结果判断

阳性:检测通道Ct值≤35.0,且曲线有明显的指数增长曲线。

可疑检测通道35.0<Ct值<38.0,且出现典型扩增曲线的样本建议重复试验,重复试验结果出现Ct值<38.0且有典型扩增曲线者为阳性,否则为阴性。

阴性:样本检测结果无Ct值且无明显的扩增曲线。

 

6. 检测方法的局限性

Ø 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

Ø 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

Ø 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

Ø 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

Ø 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;

Ø 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

 

7. 质控标准

阴性质控品:无明显扩增曲线且无Ct值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且Ct值≤30

以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

 

8. 性能指标

1)敏感性:内控样本敏感性为100%,综合评价敏感性98%以上。最低检测限不低于1000copies/ml。

2)特异性:100%。

3)稳定性:批内及批间差异≤3%。

 

注意事项

Ø 所有操作严格按照说明书进行;

Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;

Ø 反应液应避光保存;

Ø 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

Ø 实验完毕后用10%次氯酸或75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

 

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